탈모를 가지고 있는 인구의 증가로 국내 탈모 시장은 빠르게 커지고 있고, 관련 산업이 성장기에 집입하고 있다. 탈모 시장은 탈모관리제품, 관리실, 의료 시술, 기기 및 로 세분화되고 있으며 관련하여 새로운 제품들이 개발되고 있지만 화장품과 샴푸 같은 시장의 규모가 가장 크게 차지하고 있다.
이와 같은 탈모 관련 제품 소재 또는 제품을 개발하기 위해서는 효능과 안전성을 검증 할 수 있는 과학적인 근거를 마련해야 한다. 새롭게 개발 중인 제품의 경우 곧바로 임상실험에서 안전성과 효능을 검증하기에는 시간적, 경제적 부담이 적지 않다.
2016년 이후 화장품 동물시험 금지법이 통과되어 가장 확실하게 확인 할 수 있는 마우스 털을 통한 직접적인 탈모 억제 또는 발모 효능을 눈으로 직접 확인하는데 한계가 존재한다. 다양한 후보 물질들 중 효능 검증을 통해 선택해야 하는 상황이라면 더욱더 많은 부담이 되는 실정이다. 따라서 이와 같은 효능 평가는 탈모 현상을 표방할 수 있는 세포 실험 모델로 대체되어야 한다.
현재 수행되고 있는 세포 실험은 모유두세포를 중심으로 하는 2D 기반의 세포 배양 평가로, 약물 자체의 독서 평가 및 분자 생물학적 분석은 가능하지만 발모 특성 확인 및 모유두세포와 모낭상피세포의 상호작용 관찰이 불가능 하다. 이와 같은 특성들을 확인 할 수 있도록 실제 모발 신호를 구현 할 수 있는 3D 모낭 공배양 조직체의 개발이 필요하다. 최근 3D 콜라겐 조직체를 이용하여 모발 형성이 가능한 모낭 조직체가 보고되었다. 이를 입자 패턴을 통해 효율적으로 약물 효능 평가가 가능 하도록 다수의 조직이 형성되며, 관찰이 편리한 배양 구조를 제안한다.
입자의 패턴 기판의 소재는 비부착 부분의 경우 PEG, 부착 부분의 경우 RGD peptide를 개질한 실리카 입자이다. 패턴 형상은 세포를 모을 수 있는 방사형 구조를 제안하였다. 패턴의 간격은 200 um ~ 1,400 um 중 실제 모발 사이의 거리인 800 um로 선정하였다. 방사형 패턴의 두께는 세포 하나가 올라갈 수 있는 10 um 크기와 1/3 크기인 3 um 크기로 선정하였다. 이 중 10 um 크기의 패턴 두께에서는 spheroid로 형성된 후 패턴에 따라 다시 풀리는 것을 관찰, 3 um의 경우 6일이 지나도 spheroid가 풀리지 않는 것을 관찰, 3 um로 선정하였다.
탈모에 효능이 있다고 잘 알려진 유효 약물을 처리 후 mRNA 분석결과 K25, SOX2, Vimentin, Wnt10b, OCT4, BMP4, ALP 가 대표적으로 안정적으로 신호 변화가 되는 것을 관찰 하였다. 특히 K25, ALP 가 약물에 따라 증가하는 것을 통해 각각의 약물이 모발 재생 외에도 모발의 분화에도 영향을 주는 것으로 확인 되었다. 기존 Organ 평가나 동물실험 등에 비해 과학적이고, 신호 해석이 가능한 분석 방법을 개발하였다고 판단하였다. 대량의 관찰이 가능하도록 96-well 상 고속 분석을 할 수 있는 HCS(High Content Screening) 장비를 통해 추가 연구를 수행 중이다.
Alternative Abstract
The domestic hair loss market is rapidly expanding, owing to an increase in the incidence
of hair loss. Therefore, the hair loss-related industry has experienced growth. The hair
loss market is subdivided into hair loss management products, devices, management
rooms, and medical procedures. While new related products are continuously being
developed, the size of the cosmetic market, i.e., shampoos is the largest.
The development of hair loss-related products necessitates a scientific basis to verify
the efficacy and safety of the test agent. In the case of new products under development,
verifying efficacy and safety in clinical trials may be time-consuming and economically
expensive.
Since 2016, the Cosmetics Animal Test Ban Act has restricted the use of mouse hair to
test the effects of products related to hair loss control or hair growth.
Selection of several candidates through efficacy screening may become very burdensome.
Therefore, such efficacy verification strategies should be replaced with cell experimental
models of hair loss.
At present, 2D-based cell culture experiments rely on the use of dermal papilla cells,
which allow for the evaluation and molecular biological analysis of the effects of test
agents but may not confirm hair growth characteristics and the interaction between
dermal papilla cells and follicular epithelial cells. In order to confirm these characteristics,
it is necessary to develop a 3D hair follicle co-cultured tissue that can mimic real hair
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signals. Recently, a hair follicle tissue that can form hair using a 3D collagen tissue was
developed. Several tissues can allow efficient drug efficacy evaluation through particle
patterns. A culture structure that is convenient to observe has been proposed.
Silica modified with polyethylene glycol (PEG)—at the non-adhering portion—and RGD
peptide—at the attached portion—serve as the particle pattern substrate. The pattern
was proposed to have a radial structure to facilitate cell collection. The spacing of the
pattern was selected as 800 μm, which is the distance between actual hair (200 to 1,400
μm). The thickness of the radial pattern was selected as 10 μm (thickness that can be
raised by one cell), while the size was 3 μm.
With a pattern thickness of 10 μm, spheroids were formed and then released depending
on the pattern. For 3 μm thick patterns, the spheroids did not dissolve even after 6 days;
hence, 3 μm thick patterns were selected.
Result of mRNA analysis after treatment with a drug known to be effective against hair
loss revealed changes in the expression of K25, SOX2, vimentin, Wnt10b, OCT4, BMP4,
and ALP. In particular, K25 and ALP expression increased depending on the drug
treatment, indicating that the drug affected hair differentiation as well as regeneration.
Thus, the analysis method developed herein was capable of enabling better interpretation
of signals as compared to the existing organ evaluation or animal experiment methods.
Further research is being carried out using high content screening equipment that can
perform high-speed analysis on 96-wells to enable large-scale observations.